Tiempo de Respuesta

Fundamento Teórico.

El impulso nervioso se transmite a una velocidad media de 100 m/s, es decir, a 360 Km/h. Esto significa que las neuronas precisan un tiempo mínimo para transmitir la información desde que se capta el estímulo hasta que el cerebro elabora una respuesta y se ejecuta la orden. Ese período de tiempo es lo que se denomina tiempo de respuesta o capacidad de reacción.

Materiales:

• Regla de 40 cm.
• Braga para tapar los ojos.
• 
  

Objetivo:

Con esta práctica pretendemos medir el tiempo de reacción de una persona.

Procedimiento:

1. Se venda los ojos al compañero y se deja caer la regla por su mano abierta después de una señal sonora. se repite lo mismo un par de veces con cada mano.
2. Luego se deja caer pero con la regla tocando la mano del compañero y sin señal sonora, se anotan los resultados mirando los centímetros en los que el compañero cogió la regla.

Órganos de los sentidos

Fundamento teórico:

Los sentidos nos proporcionan la información vital que nos permite relacionarnos con el mundo que nos rodea de manera segura e independiente. Gracias a ellos y al sistema nervioso, nuestro cuerpo es capaz de procesar todos los estímulos que recibe (luz, sonidos, sabores, frío o calor, dolor, olores...) y generar una respuesta.

Primera Práctica: Gusto

Materiales.

• 4 Vasos de agua.
• Sal de cocina.
• Azúcar.
• Vinagre o zumo de limón.
• Café.

Procedimiento.

1. Preparamos 4 vasos con agua hasta la mitad a los cuales se les añadirá una cucharada de cada sustancia respectivamente.
2. Luego se da a probar a el sujeto con los ojos vendados cada una de las muestras mojadas en un palillo, y este indica las zonas de la lengua en el que sintió una sensación mayor.

Segunda Práctica: Gusto

Materiales

• Zanahoria.
• Papa.
• Manzana.

Procedimiento.

1. Se necesita un cubo de cada alimento aproximadamente del mismo tamaño
2. Se introduce en la boca del compañero muestras al azar de cada alimento, primero con la nariz y los ojos tapados y luego solo con los ojos vendados.

Tercera Práctica: Olfato

-Materiales

• Infusión de menta poleo 

Procedimiento.

1. Haz una infusión de menta o poleo. Repártela en tres partes: una congélala, otra mantenla a temperatura ambiente y la tercera caliéntala hasta hacerla hervir.
2. Se venda los ojos del compañero y aproxímale a su nariz, siempre a la misma distancia, la infusión a temperatura ambiente, luego la congelada y por último la hirviente.
3. Este ha de decir cuando tiene una mayor recepción olfativa.

Cuarta práctica: Tacto

Materiales

• Tijeras

-Procedimiento

1. Abre unas tijeras de forma que sus puntas se hallen separadas 40 mm.
2. Coloca las tijeras con las dos puntas o sólo con una punta sobre la piel del dorso de la mano de un compañero o compañera que tenga los ojos vendados.
3. Reduce la distancia de separación entre ambas puntas y repite.
4. Repite en las yemas de los dedos y en el antebrazo.
5. El sujeto debe decir si se le esta tocando con una o con las dos puntas.

Quinta Práctica: Tacto

Materiales

• 3 cubetas 
• Hielo

-Procedimiento

1. Introduce una mano en agua caliente y la otra en agua con unos cubitos de hielo. Mantenlas durante un minuto.
2. Introduce ambas manos en agua a temperatura ambiente. 
3. Describe la sensación térmica en cada mano.

Fotos.

Práctica: Vitamina C

Fundamento Teórico.

La vitamina C, enantiómero L del ácido ascórbico o antiescorbútica, es un nutriente esencial, en particular para los mamíferos. La presencia de esta vitamina es requerida para un cierto número de reacciones metabólicas en todos los animales y plantas y es creada internamente por casi todos los organismos, siendo los humanos una notable excepción. Su deficiencia causa escorbuto en humanos, de ahí el nombre de ascórbico que se le da al ácido, y es ampliamente usada como aditivo alimentario para prevenir este último.

Objetivo.

Comprobar la presencia de vitamina C en diferentes alimentos.

Materiales.

• Tubo de ensayo
• Naranja
• Disolución de Redoxon
• Lugol
• Pipeta
• Almidón

Procedimientos.

1. Prepara 4 tubos de ensayo. En el primero se coloca agua destila. En el segundo se pone agua caliente y un poco de almidón. En el tercero, un pedazo de pastilla de vitamina C disuelta en el agua. En el cuarto tubo, además de contener una disolución de almidón.
2. El papel del almidón es hacer de indicador, cuando el yodo reaccione transformando la vitamina C. El exceso reacciona inmediatamente, a la primera gota con el almidón, y este colorea de azul, indicándonos el consumo de la vitamina C. Añadirle una gota del lugol a los cuatro tubos de ensayo.
3. El color rojo del yodo se diluye quedando una disolución rojiza en el primer tubo. El segundo tubo azul-violeta intenso. En el tercer tubo apenas aparecerá cambio apreciable, con un ligero amarillo debido al I-, en el que se ha transformado el yodo. En el cuarto tubo, aunque en principio intenta el viraje a azul, removiendo recupera el color original, repitiéndose la situación en la gota siguiente. Hasta que aparece un color azul-violeta que no desaparece al agitar, lo que indica que se ha oxidado toda la vitamina C que había en el tubo. El número de gotas de lugol gastadas hasta el momento del cambio nos proporciona una media de la cantidad que había presente de vitamina C.

Fotos

 Fundamento teorico

El síntoma que de manera más inmediata se trata de aliviar a cualquier enfermo es el dolor; de ahí la importancia que tiene en la vida ordinaria el empleo de los medicamentos que lo disminuyen o suprimen: los analgésicos.

De manera intuitiva, el hombre siempre ha tratado de vencer al dolor utilizando los elementos naturales que encontraba a su disposición. Un ejemplo de esta terapia natural está en la costumbre de algunos indios norteamericanos de masticar corteza de sauce (Salix salix) para aliviar el dolor. La investigación de los principios activos contenidos en esta especia vegetal llevó a Charles F. Gerhart, a mediados del siglo XIX, a la obtención de un compuesto químico (el salicilato de sodio) que alivia con gran eficacia los dolores. Pero como este compuesto producía desagradables trastornos estomacales, Félix Hoffman obtuvo en 1897 el ácido acetil salicílico, de gran rapidez analgésica pero sin los efectos secundarios del salicilato. Había obtenido, sin conocer todavía su trascendencia, el analgésico más empleado en el mundo moderno.

El ácido acetil salicílico es también un medicamento eficaz para bajar la fiebre (antipirético), y como disminuye la agregabilidad plaquetaria es especialmente indicado para prevenir el infarto de miocardio. Pero a pesar de todas sus excelencias, presenta algunas contraindicaciones y efector secundarios que hay que tener en cuenta antes de su utilización.

El ácido acetil salicílico está contraindicado en los casos de hipersensibilidad a los salicilatos, úlcera de estomago y duodenal, hemofilia, lesión renal y durante el último trimestre de embarazo.

Para suplir al ácido acetil salicílico en todos estos casos se han obtenido nuevos productos como el paracetamol, de creciente utilización en el grupo de los analgésicos suaves (no narcóticos).

El grupo de los analgésicos potentes está constituido por aquellos que presentan propiedades narcóticas, como la morfina, la metadona y la codeína, y no pueden ser utilizados más que con un estricto control médico.

Objetivo

• Comprobar la presencia del ácido acetil salicilico en algunos analgésicos de uso frecuente.
• Relacionar la presencia de este con algunas de las propiedades de estos comprimidos analgésicos.
• Analizar el excipiente de los comprimidos investigados.

Materiales

• Comprimidos analgésicos de diversas marcas. 
• Tubos de ensayo. 
• Vaso de precipitados. 
• Lamparilla de alcohol o mechero de gas. 
• Gradilla para tubos de ensayo. 
• Solución de nitrato de hierro (III) 0.1 M. 
• Licor de Fehling. 
• Reactivo Lugol. 
• Papel indicador pH. 
• Agua destilada. 
• Etiquetas autoadhesivas.

Procedimiento

1. Prepara una muestra de cada analgésico que vayas a investigar, disgregando cada comprimido en un tubo de ensayo lleno de agua destilada.
2. Etiqueta cada tubo, indicando el contenido del mismo. Deposítalos en la gradilla. Antes de realizar algún ensayo con el contenido de cualquier tubo debes agitarlos, tapándolos con el dedo, para homogeneizar su contenido.
3. Investiga el pH de las suspensiones introduciendo un trozo de papel indicador del pH en cada muestra, y comprueba el color después de medio minuto. Determina el pH comparando el color obtenido con la carta de colores correspondiente. Anota el resultado logrado para cada muestra en el cuadro que se adjunta al final de la investigación.
4. Investiga el principio activo de cada muestra comprobando la presencia o ausencia de ácido acetil salicílico en ella. Para ello debes añadir, a otro tubo de ensayo limpio, unos 3 ml de la muestra investigada y seis gotas de disolución de nitrato de hierro.
5. Un color violeta indica la presencia de ácido acetil salicílico.
6. Anota los resultados obtenidos en el cuadro final. Si no obtienes una comprobación positiva, quiere decir que el principio activo analgésico es otro. Confirma esta deducción leyendo la composición indicada para este analgésico. Anota el principio activo en el casillero correspondiente.
7. Investiga el excipiente de cada comprimido.
8. El excipiente es una sustancia inactiva farmacológicamente pero que acompaña al principio activo para evitar su disgregación y dar cuerpo al comprimido. Generalmente es almidón o lactosa (un azúcar disacárido).
9. Comprueba la presencia o ausencia de almidón en 3ml de cada muestra, a la que añadirás dos o tres gotas de Lugol. La presencia de almidón se reconoce por el color azul oscuro obtenido.
10. La presencia de lactosa la investigaras en otros 3 ml de la muestra inicial de cada comprimido. Si la muestra inicial tiene un pH ácido deberá añadírsele (gota a gota) disolución de bicarbonato de sodio hasta que su pH sea básico.
11. A esta muestra de pH básico se le añadirán cuatro gotas de licor de Fehling y se calentará, al baño maría, hasta que hierva durante cinco minutos. La presencia de lactosa se reconocerá por la aparición de un precipitado amarillo.
12. Anota los resultados obtenidos para cada muestra en un cuadro como el adjunto.

Conclusiones

Marcas de analgésicos	ASPIRINA	PARACETAMOL	A.A.S	IBUPROFENO
pH	pH 3	pH 4,5	pH 3	pH 5
Ácido acetil salicílico	Sí (color violeta)	No (color azul)	Sí (color violeta)	No (blanco-amarillento)
Otros principios inmediatos		PARACETAMOL		IBUPROFENO
Almidón	Sí	Sí	Sí	No

Fotos

Observación de los tejidos animales: La sangre

Fundamento teórico:

La sangre es un tejido conectivo líquido, que circula por capilares, venas y arterias de todos los vertebrados. Su color rojo característico es debido a la presencia del pigmento hemoglobínico contenido en los eritrocitos.

Es un tipo de tejido conjuntivo especializado, con una matriz coloidal líquida y una constitución compleja. Tiene una fase sólida (elementos formes), que incluye a los eritrocitos (o glóbulos rojos), los leucocitos (o glóbulos blancos) y las plaquetas, y una fase líquida, representada por el plasma sanguíneo. Estas fases son también llamadas componentes sanguíneos, los cuales se dividen en componente sérico (fase líquida) y componente celular (fase sólida).

Su función principal es la logística de distribución e integración sistémica, cuya contención en los vasos sanguíneos (espacio vascular) admite su distribución (circulación sanguínea) hacia prácticamente todo el organismo.

Materiales:

Microscopio

Dos portaobjetos

Caja de Petri

Lanceta estéril

Algodón

Frasco lavador

Azul de toludina

Alcohol etílico 

Objetivo:

Observar las células de la sangre

Procedimiento:

1. Para la obtención de la muestra de sangre procede de la siguiente manera: Desinfecta con un algodón empapado en alcohol el pulpejo del dedo corazón de una de tus manos o de tu compañero de equipo. Abre el estuche de la lanceta estéril y, sin tocar la punta, pincha en la zona desinfectada. Inmediatamente después tira la lanceta a la basura. No olvides mantener el algodón en la zona pinchada del dedo.
2. Deposita en el borde derecho uno de los portaobjetos una gota de sangre y haz el frotis de la siguiente manera: Coloca el porta extendedor delante de la gota y tócala para que la sangre se reparta por el borde pequeño, procurando que el porta extendedor y el de la preparación formen un ángulo de 45º. Desplaza hacia la izquierda el porta extendedor, manteniendo el ángulo de forma rápida y sin levantarlo (Observa la figura).
3. Deja secar el frotis al aire rápidamente, para lo cual haz un movimiento de abaniqueo.
4. Para la fijación de la muestra, cúbrela con alcohol y espera a que se evapore.
5. Vierte sobre la preparación azul  de toluidina y déjalo actuar durante 1 minuto. Pasado este tiempo, lava la preparación abundantemente con agua.
6. Seca el dorso de la preparación con papel de filtro y colócala en el microscopio para su observación.
7. Recorre la mayor extensión posible del frotis con diferentes aumentos, prestando más atención a los bordes superior e inferior de la misma.

Fotos:

 

Determinación de grupos sanguineos

Fundamento teórico

Un grupo sanguíneo es una clasificación de la sangre de acuerdo con las características presentes o no en la superficie de los glóbulos rojos y en el suero de la sangre. Las dos clasificaciones más importantes para describir grupos sanguíneos en humanos son los antígenos (el sistema ABO) y el factor Rh.

El sistema ABO fue descubierto por Karl Landsteiner en 1901, convirtiéndolo en el primer grupo sanguíneo conocido; su nombre proviene de los tres tipos de grupos que se identifican: los de antígeno A, de antígeno B, y "O". Las transfusiones de sangre entre grupos incompatibles pueden provocar una reacción inmunológica que puede desembocar en hemólisis, anemia, fallo renal, shock y muerte.

El motivo exacto por el que las personas nacen con anticuerpos contra un antígeno al que nunca han sido expuestas es desconocido. Se piensa que algunos antígenos bacterianos son lo bastante similares a estos antígenos A y B que los anticuerpos creados contra la bacteria reaccionan con los glóbulos rojos ABO-incompatibles.

El científico austriaco Karl Landsteiner recibió el Premio Nobel de Fisiología o Medicina en 1930 por sus trabajos en la caracterización de los tipos sanguíneos ABO. Además de los grupos mayoritarios, hay otros 32 muchísimo más escasos.

Materiales

1. Portaobjetos.
2. Lancetas estériles.
3. Alfileres.
4. Sueros anti A, anti B y anti Rh.
5. Algodón.
6. Alcohol.

Procedimiento

1. Para obtener una muestra de sangre hazte una punción en la yema de un dedo con la lanceta. Aprieta la yema del dedo para que gotee y coloca 3 gotas separadas en un portaobjetos.
2. Coloca sobre la gota e la izquierda una gota de anti A, en la del centro una de anti B, y en la de la derecha una de anti Rh.
3. Mezcla bien la sangre con los sueros. Según se produzca coagulación en una o en otra, tendrás el tipo de grupo sanguíneo.

Conclusiones

Desde arriba hacia abajo en la imagen anterior observamos que:
1. El individuo de esta muestra es O - pues no aparecen coágulos.
2. El individuo de esta muestra es A - pues solo aparecen coágulos en el antígeno A
3. El individuo de esta muestra es también O -
4. El individuo de esta muestra es O + pues sólo aparecen coágulos en el antígeno D
5. El individuo de esta muestra es A + pues aparecen coágulos en el antígeno A y D
6. El individuo de esta muestra es B - pues aparecen tan solo coágulos en el antígeno B

Fotos:

Práctica: Disección y observación de riñón

Fundamento teórico.

Los riñones son órganos excretores en los vertebrados, tienen forma de judía o habichuela. En los seres humanos, cada riñón tiene, aproximadamente, el tamaño de un puño cerrado.

Objetivo.

• Observación de las principales estructuras de riñón de un cerdo mediante la disección.
• Analisis y comprensión del funcionamiento renal y de la necesidad de mantener la constancia del medio interno.

Materiales.

1. Tijeras, pinzas, aguja enmanganada y bisturí
2. Cubeta y plancha de disección
3. agua oxigenada
4. pipeta
5. porta y cubreobjetos
6. microscopio
7. lupa binocular
8. balanza
9. cinta métrica o regla
10. riñón de cordero o de cerdo
11. agua destilada
12. guantes de látex

Procedimiento.

1. Coloque el riñón en la plancha de disección y observa su anatomía externa. Identifica, dibuja, analiza, describe su forma, coloración, orificios de la arteria renal, vena renal y uréteres
2. mide el riñón en sus tres dimensiones y pesaló en la balanza, Anota los resultados obtenidos.
3. Secciona longitudinalmente el riñón con el bisturí con un corte continuo para procurar no dañar su estructura interna
4. extiende ambas partes en la cubeta de disección y fíjate en su anatomía interna, puedes utilizar la lupa para observar con mas detalle la estructura interna, identifica la capsula, la corteza, la zona medular y la pelvis renal. Anota el color, aspecto, forma, textura de cada una de las partes
5. Con una pipeta extiende sobre una superficie recién cortada del riñón una cantidad pequeña de agua oxigenada. Observa si se producen burbujas al cabo de unos segundos pasa el dedo por la superficie para eliminar el agua oxigenada y observa los tubulos colectores y las nefronas, donde continua la formación de burbujas.
6. deposita sobre un portaobjetos una pequeña muestra de la aguja enmanganada añade 1 gota de agua y coloca encima de un cubreobjetos y sobre este una tira de papel de filtro doblada varias veces, aprieta la preparación con el dedo pulgar sin hacer movimientos laterales para evitar que se deterioren las estructuras.
7. Observa la preparación al microscopio. Repetir el proceso para la zona medular

Conclusión.

Medidas 13 x 7 cm

peso 170 g

Cuestiones
1.¿ Por qué la corteza presenta aspecto granuloso?

Porque en la corteza se encuentran los túbulos colectores

2.¿Cuál es la diferencia entre corteza y médula? 
La diferencia es que en la corteza se encuentran los glomérulos y los tubos colectores.

3. ¿ Por qué se produce efervescencia al añadir agua oxigenada?¿ Por qué es más intenso el burbujeo en la nefrona que en el resto del tejido renal?
Se produce efervescencia porque las moléculas orgánicas entran en contacto con el agua oxigenada liberando CO2.

4.¿Qué elementos de la nefrona has identificado en las preparaciones microscópicas?
No podemos realizar esta actividad, ya que las preparaciones microscópicas no han salido bien.


Fotos